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COSMOSIL Cholester色谱柱

产品简介:COSMOSIL Cholester色谱柱是反相体系的HPLC柱,胆甾醇键合硅胶填料,具有和传统的烷基键合C18、C30硅胶填料一样的疏水性,但是在相同的分析条件下,Cholester对疏水化合物的立体选择性好。

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更新时间:2023-11-08

厂商性质:代理商

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产品描述

COSMOSIL Cholester色谱柱是反相体系的HPLC柱,胆甾醇键合硅胶填料,具有和传统的烷基键合C18、C30硅胶填料一样的疏水性,但是在相同的分析条件下,Cholester对疏水化合物的立体选择性好。

Cholester与C18柱具有相同的疏水性。因此使用Cholester代替C18柱或C30柱时,不需要改变分析条件。与传统的C18柱相比,Cholester具有更强的选择性和分离同分异构体或结构类似物的能力,它可以很好的代替传统C18色谱柱。


· 胆甾醇基固定相

· 使用条件与C18柱相同

· 提高了立体选择性和几何异构体的分离度

· 适用于天然物的分离

<strong>COSMOSIL Cholester色谱柱</strong>

规格


色谱柱5μm Cholester
内径(mm)2.03.04.6102028
柱长(mm)ALLALLALL20-15025020-100150-250ALL
出厂溶剂乙腈 / 水 = 60 / 40甲醇 / 水 = 70 / 30甲醇 / 水 = 80/ 20甲醇 / 水 = 70 / 30甲醇 / 水 = 80/ 20
冲洗方法
  1. 去除色谱柱内的缓冲液,盐,酸的方法:使用不含缓冲液,盐,酸的流动相冲洗10-15分钟。
    例:流动相为甲醇/磷酸缓冲液(20mmol/L) =50/50时,就使用甲醇/水 =50/50冲洗

  2. 冲洗色谱柱内附着物的方法,基线不稳时的解决方法

  • 样本不是蛋白质时,使用甲醇或四氢呋喃冲洗。

  • 样品是蛋白质时,使用含0.1%三氟·乙酸的50-70%的乙腈/水冲洗

保存方法
  1. 短期(数日)保存:
    使用不含缓冲液,盐,酸的流动相冲洗10-15分钟。保存。
    例:流动相为甲醇/磷酸缓冲液(20mmol/L) =50/50时,就使用甲醇/水 =50/50冲洗

  2. 长期(1个月以上)保存:
    使用后,先用不含酸和盐的流动相清洗色谱柱,再将流动相置换为乙腈/水=70/30或 甲醇/水=70/30,保存。

pH范围pH2~pH7.5
最大耐压20MPa15MPa
温度范围最高可耐60度,建议在20~50度下进行分析。
可使用的溶剂

除碱溶液和强酸溶液(pH1.5以下)以外都可以使用。(强碱溶液会使硅胶溶化,强酸溶液会使固定相脱落)
注意点:
溶剂粘度过高会导致压力上升,请将压力控制在20Mpa以下。 使用酸性流动相或凝固点高的溶剂后,必须清洗色谱柱。

注意事项
  • 一般情况下缓冲液浓度为0.005~0.02 mol/L即可。

  • 流动相在使用前一定要通过0.5μm以下的滤膜过滤。

  • 蛋白质反相模式分析时,请使用大孔径色谱柱(孔隙直径300Å) COSMOSIL Protein - R(粒径5μm)。





色谱柱2.5μm Cholester
内径(mm)2.03.0
柱长(mm)ALLALL
出厂溶剂乙腈 / 水 = 50 / 50
冲洗方法
  1. 去除色谱柱内的缓冲液,盐,酸的方法:使用不含缓冲液,盐,酸的流动相冲洗10-15分钟。
    例:流动相为甲醇/磷酸缓冲液(20mmol/L) =50/50时,就使用甲醇/水 =50/50冲洗

  2. 冲洗色谱柱内附着物的方法,基线不稳时的解决方法

  • 样本不是蛋白质时,使用甲醇或四氢呋喃冲洗。

  • 样品是蛋白质时,使用含0.1%三氟·乙酸的50-70%的乙腈/水冲洗

保存方法
  1. 短期(数日)保存:
    使用不含缓冲液,盐,酸的流动相冲洗10-15分钟。保存。
    例:流动相为甲醇/磷酸缓冲液(20mmol/L) =50/50时,就使用甲醇/水 =50/50冲洗

  2. 长期(1个月以上)保存:
    使用后,先用不含酸和盐的流动相清洗色谱柱,再将流动相置换为乙腈/水=70/30或 甲醇/水=70/30,保存。



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5μm






<strong>COSMOSIL Cholester色谱柱</strong>


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